Оценка эффективности дезинфицирующих средств в отношении полирезистентных госпитальных штаммов группы ESKAPE и паразитарных патогенов в многопрофильном стационаре

Проблема антибиотикорезистентности и формирования устойчивости микроорганизмов в том числе паразитарного генеза к дезинфицирующим средствам (ДС) является одной из главных угроз биологической безопасности в медицинских организациях. Циркуляция полирезистентных штаммов группы ESKAPE и загрязнение больничной среды паразитарными патогенами требует постоянного мониторинга и оценки эффективности используемых режимов дезинфекции.

Цель. Оценка чувствительности/устойчивости бактериальных изолятов, выделенных из объектов окружающей среды и биологического материала, к антибиотикам и ДС, а также анализ овицидной активности ДС применяемых в городских клинических больницах г. Москвы в отношении паразитозов.

Материалы и методы. Проведено санитарно-бактериологическое и санитарно-паразитологическое исследование 136 проб смывов с объектов внешней в стационаре. Идентификацию микроорганизмов проводили методом масс-спектрометрии (MALDI-TOF MS). Определение чувствительности к ДС осуществляли в соответствии с нормативными документами. Санитарно-паразитологический отбор и исследование смывов с поверхностей для оценки овицидной активности дезинфицирующих средств, применяемых в медицинском стационаре, осуществляли в соответствии с действующими нормативнометодическими документами и проанализированными научными данными.

Результаты. Выделено 7 штаммов Staphylococcus aureus, 5 — Acinetobacter baumannii, 1 штамм Enterococcus faecium и 11 штаммов Klebsiella pneumoniae, относящихся к группе ESKAPE. Установлено, что ДС «Омника дез», «Омника ОФА», «Торихлор» эффективны в отношении всех выделенных штаммов. Выявлена низкая эффективность ДС «Омника энзим» (в концентрациях 0,5-1%) в отношении A. baumannii, P. aeruginosa и K. pneumoniae; ДС «Ториокси» — в отношении K. pneumoniae; ДС «Анолит» — в отношении S. aureus (эффективность<99,99%). А также выявлено, что данные дезинфектанты применяемые в обследованном медицинском стационаре не обладают овицидными свойствами.

Заключение. Выявлена внутрибольничная циркуляция полирезистентных штаммов ESKAPE и загрязнение больничной среды паразитарной инвазией. Обоснована необходимость ротации ДС («Ториокси», «Анолит», «Омника энзим») на более эффективные альтернативы. Подтверждена эффективность новых средств («Клиндезин НУК 5») для бактериальной группы инфекций и последующего их включения в схемы дезинфекции.

1. Шулакова Н.И., Тутельян А.В., Акимкин В.Г. Актуальность и подходы внедрения риск-ориентированного подхода в практику здравоохранения. – Контроль и профилактика инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП-2023). Сборник тезисов XI конгресса с международным участием. Москва – 2023:95-97.

2. Распоряжение Правительства РФ от 25.09.2023 № 2630-р «Об утверждении Стратегии профилактики и контроля антимикробной резистентности в Российской Федерации на период до 2030 года».

3. Герасимов В.Н., Асланян Е.М., Маринина Н.Н., Кузнецова К.Ю., Чебышев Н.В., Федорова Л.С. Сравнительная противопаразитарная активность дезинфицирующих средств из различных химических групп – Медицинская паразитология и паразитарные болез- ни. – 2023;3: 32-42.

4. Сергиев В. П., Кузнецова К. Ю. Современные проблемы в сфере паразитарных болезней и их терапии – Инфекционные болезни – 2014; 1:12- 16

5. Онищенко Г.Г. Эпидемиологическое благополучие населения России // Журн. микробиол. – 2013;1: 42–51.

6. Сергиев В. П. Проблемы медицинской паразитологии – Журн. микробиол. – 2013; 1:102–105

7. Кожевникова Г.М., Вознесенский С.Л., Ермак Т.Н., Петрова Е.В., Голуб В.П., Барышева И.В. Оппортунистические заболевания у больных ВИЧ- инфекцией в отделении интенсивной терапии //Терапевтический архив. 2018; 90(11):13-17.

8. МУ 3.5.1.4100-24 «Оценка чувствительности к дезинфицирующим средствам микроорганизмов, циркулирующих в медицинских организациях

9. Глущенко В.А., Лямин А.В., Круглов Е.Е. Проблема внутрибольничных инфекций в многопрофильном стационаре как часть экосоциальных взаимоотношений человека и окружающей среды – Известия Самарского научного центра Российской академии наук. – 2014; 5(2):839-842.

10. Rice L.B. Federal funding for the study of antimicrobial resistance in nosocomial pathogens: no ESKAPE. – J. Infect. Dis. – 2008; 197(8):1079–1081.

11. Donlan R.M. Biofilms: microbial life on surfaces – Emerg. Infect. Dis. – 2002; 8(9): 881– 890.

12. Meskani N, Ghissassi IE, Yassara S, A. Benkcim. Microbiological monitoring of surfaces in the central operating room: Analysis of samples collected from April to September 2024.. . – Int J Med Microbiol Trop Dis. –2026;12(1):68-74

13. Paudel N., Awasthi N., Lekhak B., Acharya A. Prevalence Of Multi Drug Resistant Bacteria On Environmental And Medical Device Surfaces Of Korea Nepal Friendship Hospital –bioRxiv – 2022.02.20.481232.

14. Gristina AG, Jennings RA, Naylor PT, Myrvik QN, Webb LX. Comparative in vitro antibiotic resistance of surface-colonizing coagulase-negative staphylococci. – Antimicrob Agents Chemother. – 1989; 33(6):813-6.

15. Tamsi NSF, Latif MT, Othman M, Abu Bakar FD, Yusof HM, Noraini NMR, Zahaba M, Sahani M. Antimicrobial resistance of airborne bacterial populations in a hospital environment. – Environ Monit Assess. – 2022; 194(9):629.

16. Rutala W.A., Boyce J.M., Weber D.J. Disinfection, sterilization and antisepsis: An overview. – Am J Infect Control – 2023; 51(11S):A3-A12.

17. Nygren E, Bergström B. Potential sources of contamination on textiles and hard surfaces identified as high-touch sites near the patient environment. – PLoS ONE. – 2023; 18(7):e0287855.